进行微生物学检验时，对临床标本的采集有何要求？标本的采集非常重要。细菌感染通常是通过培养的方法检测的，而病毒通常是通过抗原或者核酸来检测的。细菌培养和鉴定，以及药敏试验，是合理使用抗菌药物的前提，好的标本决定一切，这是检验领域的一句俗话
进行微生物学检验时，对临床标本的采集有何要求？
标本的采集非常重要。
细菌感染通常是通【读：tōng】过培养的方法检测的，而病毒通亚博体育常是通过抗原或者核酸来检测的。
细菌培养和鉴定，以及药敏试验，是（shì）合理使用抗菌药物的澳门威尼斯人前提，好的标本决定一切，这是检验领域的一句俗话。不恰当的标本、不恰当的采集时间、不规范的采集方法，很可能造成假阴性，假阳性，杂菌污染等，延误诊断，危及生命。
对于严重感染，我们是需要确定病原菌的，标本应该选择细菌可能定植的部位wèi ，如深部痰液，胸水，血液等，标本提取的时间应该在抗菌药物使用前，最好在发生寒战[繁体：戰]的时候。标本的采集一定要[yào]规范，避免把护士或医生手上，导管，或者采集器本身的杂菌带入标本。
病毒感染较少检测，除了一些特殊的，如肝炎病毒，巨细胞病毒，以及其他{tā}一些传染病病毒等。病毒要达到一定拷贝量，才能用核酸(繁：痠)定量的方法检测出来。而抗原抗体检测，相对来水受到标本影响较小。
痰液标本做DNA提取的处理方法有哪些？
本人不是很清楚我wǒ 觉得可以参考：张军力， 托娅， 王育民. 不同的液化方法对痰液DNA提取效果比较[jiào][J]. 检验医学， 2009， 24#286#29:456-458
4种不同的液化方法 方法1:500 μ L痰液加入5 mL 1 mol/L氢氧化钠， 振摇液化30 min后[繁：後]， 14 000 r/min#28离心半径为6.8 cm#29离心5 min， 沉淀用1.5 mL去离子水洗， 12 000 r/min#28离心半径为6.8 cm#29离心xīn 5 min， 留沉淀待用
方法2:痰液中加入4倍体积的1 mol/L 氢氧{拼音：yǎng}化钠， 混合液化30 min， 80 ℃消xiāo 化30 min， 取1.5 mL于离心管， 12 000 r/min#28离心半径为6.8 cm#29离心5 min， 沉淀用三羟甲基氨基甲烷-盐酸#28Tris-HCl#29和乙二胺四乙酸#28EDTA#29缓冲液洗3次， 12 000 r/min#28离心半径为6.8 cm#29离心5 min， 取沉淀待用
方法3:Saccomanno液#28每50毫升固定液中含50%乙醇48 mL， 2%聚乙二醇1 mL、0.3%利福平1 mL#29、 二硫苏糖醇#28DTT#29液#280.1 g DTT、0.78 g氯化钠、0.02 g氯化huà 钾、0.112 g磷酸二氢钠、0.02 g磷酸【suān】二氢钾， 加水至2 L， 使DTT浓度为0.005%[4]#29等体积混合， 1~2倍体积加入到痰液中， 振摇液化30 min
方{pinyin：fāng}法4:痰液用1~2倍体积世界杯液化剂#280.5%N-乙酸-L半胱氨酸， 1.45%枸橼酸钠， 2%氢氧化钠#29振摇液化30 min。
痰液皇冠体育中DNA提取采用经典的酚-氯仿抽提的方法。加等体积氯仿:异戊醇#2824:1#29混匀， 8 000 r/min#28离心半径为6.8 cm#29离心10 min， 转移上层水相， 加2倍体积无水【拼音：shuǐ】乙醇和1/10体积3 mol/L醋酸钠， 混匀， -20 ℃ 60 min后， 12 000 r/min#28离心半径为6.8 cm#29离心15 min， 以70%乙醇洗涤1~2次， 室温稍干燥后加入100 μ L Tris-HCl和EDTA缓冲液， 溶解DNA。
吸光度#28A#29检测 应用Beckman Coulter DU800型核酸蛋白分析仪检测波长为260和280 nm处的A。
该文认为方法3：Saccomanno法和DTT法的联合应用，娱乐城 对痰液的固定液化效果较好， 有利于痰液DNA的提取【拼音：qǔ】
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