进行微生物学检验时，对临床标本的采集有何要求？标本的采集非常重要。细菌感染通常是通过培养的方法检测的，而病毒通常是通过抗原或者核酸来检测的。细菌培养和鉴定，以及药敏试验，是合理使用抗菌药物的前提，好的标本决定一切，这是检验领域的一句俗话
进行微生物学检验时，对临床标本的采集有何要求？
标本的采集非常重要。细菌感染通常是通过培养的方法检测的，而病毒通常是通过抗原或者核酸【练：suān】来检测（繁：測）的(读：de)。
细菌培养和鉴【练：jiàn】定，以及药敏试验，是合理使用抗菌药物的前提，好的标本决定一切，这是检验领域的一句俗话。不恰当的标本、不恰当的采集时间、不规范的采集方《fāng》法，很可能造zào 成假阴性，假阳性，杂菌污染等，延误诊断，危及生命。
对于严重感染，我们是需要确定病原菌的，标本应该选择细菌可能定【拼音：dìng】植的部位，如深部痰液，胸水，血液等，标本提取的时间应该在抗菌药物使用前，最好在发生寒战的时候。标本的(读：de)采集一定要规范，避免把护士或医生手上，导管，或者采集器本身的杂[繁：雜]菌带入标本。
病毒感染较少检测，除了一些特殊[读：shū]的，如肝炎病毒，巨细胞病毒，以及其他【拼音：tā】一些传染病病毒等。病毒要达到一定拷贝量，才能用核酸定量的方法检测出来。而抗原抗体检测，相对来水受到标本影响较小。
痰液标本做DNA提取的处理方法有哪些？
本人不是很清楚我觉得《dé》可以参考：张军力， 托娅， 王育民. 不同的液化方法对痰液DNA提取效果比较[J]. 检验医【练：yī】学， 2009， 24#286#29:456-458
4种不同的液化方法 方法1:50世界杯0 μ L痰液加入5 mL 1 mol/L氢氧化钠， 振摇液化30 min后， 14 000 r/min#28离心xīn 半径为6.8 cm#29离心5 min， 沉淀用1.5 mL去离子水洗， 12 000 r/min#28离心半径为6.8 cm#29离心5 min， 留沉淀待用
方【练：fāng】法2:痰液中加入4倍体积的1 mol/L 氢氧化钠， 混合液化30 min， 80 ℃消化30 min， 取1.5 mL于离心(读：xīn)管， 12 000 r/min#28离心半径为6.8 cm#29离心5 min， 沉淀用三羟甲基氨基甲烷-盐酸#28Tris-HCl#29和乙二胺四乙【拼音：yǐ】酸#28EDTA#29缓冲液洗3次， 12 000 r/min#28离心半径为6.8 cm#29离心5 min， 取沉淀待用
方法3:Saccomanno液#28每50毫升固定液中含50%乙醇48 mL， 2%聚乙二醇亚博体育1 mL、0.3%利福平1 mL#29、 二硫苏糖醇#28DTT#29液#280.1 g DTT、0.78 g氯化钠、0.02 g氯化钾、0.112 g磷酸二氢钠、0.02 g磷酸二氢钾， 加水至2 L， 使{pinyin：shǐ}DTT浓度为0.005%[4]#29等体积混合， 1~2倍体积加入到痰液中， 振摇液化30 min
方法4:痰液用1~2倍bèi 体积液化剂#280.5幸运飞艇%N-乙酸-L半胱氨酸， 1.45%枸橼酸钠， 2%氢氧化钠#29振摇液化30 min。
痰液中DNA提取采用经典的酚-氯【lǜ】仿抽提的方法。加等体积氯仿:异戊醇#2824:1#29混匀， 8 000 r/min#28离心半径为6.8 澳门金沙cm#29离心10 min， 转移上层水相， 加2倍体积无水乙醇和1/10体积3 mol/L醋酸钠， 混匀， -20 ℃ 60 min后， 12 000 r/min#28离心半径为6.8 cm#29离心15 min， 以70%乙醇洗涤1~2次， 室温稍干燥后加入100 μ L Tris-HCl和EDTA缓冲液， 溶解DNA。
吸光度#28A#29检测 应用Beckman Coulter DU800型核酸蛋白分析仪检测波长为260和280 nm处的A。
该文认为方法3：Saccoman亚博体育no法和DTT法的联合应用， 对痰液的固定液（读：yè）化效果较好， 有利于痰液DNA的提取
本文链接：http://21taiyang.com/Open-SourceComputers/6602590.html
微【wēi】生物痰标本采集时间 进行微生物学检验时，对临床标本的采集有何要求？转载请注明出处来源